Как определить концентрацию гемоглобина методом сали

1. Расчет должного основного обмена по таблицам Гаррис-Бенедикта.

Цель
работы: освоить методику расчета должного
основного обмена по таблицам.

Ход
работы: с помощью ростомера измеряют
рост испытуемого и взвешивают его на
весах. В соответствии с полом испытуемого
берут таблицу для мужчин или для женщин
(у мужчин основной обмен на 7-10 % выше,
чем у женщин). Таблица состоит из двух
частей – А и Б. Из части таблицы А
выписывают первое число, стоящее против
веса испытуемого.

К нему прибавляют
второе число, найденное из части таблицы
Б по возрасту испытуемого и его росту.
Сумма двух этих чисел представляет
собой должную (нормальную) величину
основного обмена. В норме отклонение
реального основного обмена от должного
не должно превышать 10% (как в сторону
повышения, так и в сторону понижения).

Процент отклонения
ОО = 0,75 х (Частота пульса Пульсовое
давление х 0,74) – 72.

У испытуемого в
положении лёжа на спине в условиях
максимального мышечного покоя и
минимального эмоционального напряжения
произведите трёхкратное измерение
систолического и диастолического
артериального давления и частоты пульса.
Интервал между измерениями должен быть
1-2 минуты. Для расчётов по формуле Рида
берутся минимальные значения измеренных
параметров.

Цель
работы: усвоить основные этапы расчета
энергетического обмена по исходным
данным непрямой калориметрии.

Ход
работы: записать в тетрадь условия
задачи, продиктованные преподавателем.
Рассчитать величину энергетического
обмена по данным газоанализа. Сравнить
свой результат с правильным решением.

Пример
1. В ходе исследования получены следующие
числа: объём выдохнутого за 5 минут
воздуха 35 л, концентрация О2
в нем 17 %, концентрация СО2
3,5 % ; концентрация О2
в атмосфере 21 % (20,96 %), концентрация СО2
в атмосфере 0,03 % (в данных расчётах можно
пренебречь). Процент потреблённого О2:
21-17 = 4 (4 мл из 100 мл воздуха).

Процент
выделенного СО2:
3,5 – 0 = 3,5 (3,5 мл в 100 мл воздуха).

Дыхательный
коэффициент (ДК) = 3,5 мл / 4 мл = 0,87.

Калорический
эквивалент О2
(КЭО2)
при
данном ДК равен 4,88 ккал/л (по данным
таблицы)

Количество
потреблённого О2
за 5 минут: 35000 мл х 4 мл / 100 мл = 1400 мл = 1,4
л

Энергозатраты
за 5 минут: 1,4 л х 4,88 ккал/л = 6,83 ккал

Энергозатраты
за час: 6,83 ккал х 12 = 81,96 ккал

Энергозатраты
за сутки: 81,96 ккал х 24 = 1967 ккал

КЭО2
при различных значениях ДК

ДК	КЭО2 , ккал/л	ДК	КЭО2 , ккал/л	ДК	КЭО2 , ккал/л	ДК	КЭО2 , ккал/л
0,70	4,686	0,78	4,776	0,86	4,876	0,94	4,973
0,71	4,690	0,79	4,779	0,87	4,887	0,95	4,985
0,72	4,702	0,80	4,801	0,88	4,900	0,96	4,997
0,73	4,714	0,81	4,813	0,89	4,912	0,97	5,010
0,74	4,727	0,82	4,825	0,90	4,924	0,98	5,022
0,75	4,739	0,83	4,838	0,91	4,936	0,99	5,034
0,76	4,752	0,84	4,850	0,92	4,948	1,00	5,047
0,77	4,764	0,85	4,863	0,93	4,960

Пример
2. Данные газоанализа выдохнутого
воздуха по Холдейну: 10,0; 9,62; 7,98. Вычислить
дыхательный коэффициент (ДК).

Содержание
СО2
в выдыхаемом воздухе: 10,0 мл – 9,62 мл =
0,38 мл

Процент
СО2
в выдыхаемом воздухе: 0,38 х 100 / 10 = 3,8%

Содержание
О2
в выдыхаемом воздухе: 9,62 мл – 7,98 мл =
1,64 мл

Процент
О2
в выдыхаемом воздухе: 1,64 х 100 / 10 = 16,4%

Процент
потреблённого О2:
21-16,4 = 4,6 (4,6 мл из 100 мл воздуха).

Процент
выделенного СО2:
3,8 – 0 = 3,8 (3,8 мл в 100 мл воздуха).

ДК
= объём выделенного СО2 / объём поглощённого
О2
= 3,8 мл / 4,6 мл = 0,83

Пример
3. Определить рабочую прибавку спортсмена,
имеющего вес 65 кг, рост 164 см, возраст 21
год. Спортсмен пробежал 10 км со скоростью
12 км/час (при этой скорости в 1 час
расходуется 720 ккал).

Основной
обмен (ОО) спортсмена (по таблице
Гаррис-Бенедикта): 960 679 = 1639 ккал. В 1 час
ОО составит 1639 / 24 = 68 ккал. Мышечная
работа выполнялась менее часа, т.к. он
бежал со скоростью 12 км/час дистанцию
10 км. Спортсмен бежал 10 / 12 = 0,83 часа. ОО
за это время составит 68 х 0,83 = 56,4 ккал.

2. Определение групповой принадлежности крови по системе ав0 методом цоликлонов.

ЦЕЛЬ:ознакомиться
с методикой определения групп крови по
системе АВ0 методами стандартных
сывороток и стандартных эритроцитов.

ОСНАЩЕНИЕ:стерильные
перчатки, тарелка с нанесенными на ней
обозначениями агглютининов сывороток,
стандартные сыворотки I, II, III групп двух
серий с разным титром антител, стеклянные
палочки, физиологический раствор,
стандартные эритроциты групп А(II) и В
(III).

а)
Метод стандартных сывороток.

ХОД
РАБОТЫ: наносят на тарелку в соответствующие
квадраты (лунки) пипеткой крупные капли
сывороток двух серий I(0), II(A), III(B) групп
(нельзя
допускать смешивания сывороток!). Концом
чистой стеклянной палочки (или углом
предметного стекла) захватывают небольшое
количество крови и помещают рядом с
каплей сыворотки (капля вносимой крови
должна быть в 10 раз меньше капли
сыворотки), осторожно перемешивают.

Вносят кровь и в две остальные капли
сывороток, используя другие стеклянные
палочки или углы предметного стекла.
Слегка покачивая тарелку в течение 5
мин, наблюдают за каплями. Затем добавляют
каплю физиологического раствора для
исключения ложной агглютинации и
оценивают результат. Агглютинация
выглядит в виде мелких красных крупинок,
постепенно увеличивающихся в размере
на фоне светлеющей сыворотки.

б)
Метод стандартных эритроцитов.

ХОД
РАБОТЫ: на тарелку, разделенную на
секторы наносят каплю сыворотки
исследуемой крови, которая в 10 раз меньше
капли стандартных эритроцитов; рядом
поместите каплю стандартных эритроцитов
А(II) и В (III) групп. Действия проводят
разными стеклянными палочками.
Перемешивают капли углом предметного
стекла, тарелочку покачивают в течение
3 минут;

затем добавляют по капле
физиологический раствор для исключения
ложной агглютинации, продолжают смешивать
покачиванием и через 5 минут оценивают
результат. На основании наличия ( ) или
отсутствия (-) агглютинации делают вывод
о принадлежности сыворотки исследуемой
крови к определённой группе по системе
АВО.

Оценка
результатов.

Группы крови	стандартные сыворотки (их антитела взаимодействуют с антигенами на мембранах эритроцитов исследуемой крови)			Стандартные эритроциты (их антигены взаимодействуют с антителами сыворотки исследуемой крови)
	I ab	II b	III a	А(II)	В (III)
0(I) ab	—	—	—
A(II)b		—		—
B(III)a			—		—
АВ (IV) —				—	—

Цоликлоны
— продукты гибридных клеточных линий,
полученных в результате слияния мышиных
антителообразующих В-лимфоцитов с
клетками мышиной миеломы. Индивидуальные
гибридные клеточные линии продуцируют
гомогенные антитела только одного
класса иммуноглобулинов, полностью
идентичных по структуре и биологической
активности. Антитела, продуцируемые
клетками одного клона (потомство одной
клетки), являются моноклональными.

Цоликлоны анти-А
(аналог агглютинина альфа) и анти-В
(аналог агглютинина бета) предназначены
для определения групп крови человека
вместо
стандартных сывороток.
Реагенты не должны храниться открытыми,
так как при высыхании активность антител
снижается; температура воздуха в
помещении должна быть от 15 до 25º С.

ЦЕЛЬ:
освоить методику определения групп
крови по системе АВ0 методом цоликлонов.

ОСНАЩЕНИЕ:
стерильные перчатки, цоликлоны анти-А
(розовый цвет) и анти-В (голубой цвет),
исследуемая кровь.

ХОД
РАБОТЫ: наденьте перчатки. Нанесите на
пластинку по одной капле (0,1 мл) реагентов
анти-А и анти-В и рядом по одной капле
крови (0,1 мл), которая в 10 раз меньше капли
сыворотки.

Реактив
и кровь тщательно перемешайте стеклянными
палочками. Наблюдение за ходом реакции
проводите при легком покачивании
пластинки в течение 2-5 минут. При
положительном результате — агглютинация
эритроцитов; при отрицательном результате
капля — равномерно окрашена в красный
цвет, агглютинаты не обнаруживаются.

Группа крови	цоликлон анти-А	цоликлон анти-В
0(I) ab	—	—
A(II)b		—
B(III)a	—
АВ (IV) —

цоликлон анти-А	цоликлон анти-В	Вывод:
		эритроциты исследуемой крови относятся к группе

Оседание
эритроцитов — свойство осаждаться на
дне сосуда (капилляра) при сохранении
крови в несвертывающемся состоянии в
виде так называемых «монетных
столбиков», над которыми образуется
слой прозрачной жидкости — плазмы.
Эритроциты оседают в результате того,
что их относительная плотность больше,
чем относительная плотность плазмы.

На
величину СОЭ влияют белки (особенно
крупнодисперсные) плазмы, которые, при
адсорбции на отрицательно заряженных
эритроцитах, уменьшают их поверхностный
заряд и способствуют сближению эритроцитов
и их ускоренной агломерации. При
определении СОЭ температура в помещении
должна быть18-22º С. При более низкой
температуре — оседание замедляется; а
при более высокой — ускоряется. В норме
СОЭ составляет: у мужчин до 10 мм/час;
у женщин до 15 мм/час.

ЦЕЛЬ:освоить
методику определения СОЭ.

ОСНАЩЕНИЕ:
Прибор Панченкова (СОЭ-метр), капилляр
на 100 делений (имеющий просвет 1 мм и
длину 100 мм), образцы крови, 5% раствор
лимоннокислого натрия (цитрата).

ХОД РАБОТЫ:Капилляр предварительно промывают 5% раствором цитрата. До метки «Р» набирают реактив — 5% раствор цитрата и выпускают в тигелек или пробирку Видаля. Затем до метки «К» дважды набирают кровь и помещают в тигелек или пробирку, тщательно перемешивают (реактив с кровью должны находиться в соотношении 1:4). Полученную смесь набирают в капилляр до метки «К» (0) и устанавливают в СОЭ-метр (штатив) вертикально между двумя резиновыми прокладками на 1 час. Через 1 час определяют величину оседания по столбику плазмы над осевшими эритроцитами (по светлой части): деление капиллярной пипетки, соответствующее границе плазмы и эритроцитов, отмечают как величину СОЭ в мм/час.

Рис. Прибор Панченкова. а – штатив с капиллярами; б – капилляр.

3. Изучение свойств слюны.

Цель
работы: определение основных свойств
органических веществ (амилазы и муцина),
входящих в состав слюны.

Оснащение:
1 % раствор крахмального клейстера, 1 %
раствор крахмала, 10 % раствор уксусной
кислоты, йод, пробирки, держатели для
пробирок, пипетки, фильтровальная
бумага.

Ход работы:
используют разбавленную слюну человека.
Для этого используют пробирки со слюной
из предыдущей самостоятельной работы.
В каждую из них добавляют по 10 мл
дистиллированной воды. В первую пробирку
добавляют несколько капель уксусной
кислоты. Слюна теряет свой вязкость и
тягучесть, так как муцин выпадает в виде
белого осадка.

Разбавленную слюну в
остальных пробирках делят пополам,
разливая последовательно в другие три
пробирки, при этом сохраняют их
первоначальную нумерацию. В первые три
пробирки наливают по 2 мл клейстера, а
во вторые три пробирки сырого крахмала.
Все шесть пробирок помещают в теплую
воду (37 – 38 град С) на пять – восемь
минут.

Все пробирки одновременно
вынимают, охлаждают и проводят реакцию
на крахмал путем добавления одной капли
йода во все пробирки. При реакции с йодом
жидкость в пробирках окрашивается в
жёлтый (полный гидролиз крахмала),
розовый (частичный гидролиз крахмала)
или фиолетовый (отсутствие гидролиза
крахмала) цвет. Сравнивают интенсивность
окраски, делают выводы.

4. Определение скорости оседания эритроцитов (соэ) методом т.В.Панченкова.

Цель
работы: определение влияния раздражителей
полости рта на скорость слюноотделения.

Оснащение:
секундомер, четыре градуированных
пробирки на 10 мл., стеклянная воронка,
фильтровальная бумага, 2 г. поваренной
пищевой соли (NaCl),
пластик жевательной резинки (с любой
вкусовой добавкой не содержащей ментола),
200 мл дистиллированной воды, сосуд для
отработанного материала.

а) Проглатывают
слюну и запускают секундомер, а затем
не глотают слюну, а выпускают ее в первую
градуированную пробирку в течение 2
минут. Записывают уровень слюны, собранный
в течение этого времени, не считая пены.
Полученный уровень слюны в первой
пробирке является контрольным (исходным).

б) Предложите
испытуемому прочитать небольшое
стихотворение или прочитать несколько
абзацев из любой интересной для него
книги. После чтения повторите забор
слюны по пункту а) во вторую пробирку.

в) С помощью
фильтровальной бумаги положите на
поверхность языка небольшое количество
поваренной соли и подержите ее в полости
рта в течение 20 сек., а затем аккуратно
сплюньте в сосуд для отобранного
материала и далее повторите забор слюны
по пункту а) в третью пробирку.

г) Поместите в
ротовую полость пластик жевательной
резинки и жуйте в течение одной минуты,
после чего аккуратно сплюньте в сосуд
для обработанного материала и вновь
повторите забор слюны по пункту а) в
четвертую пробирку.

5. Гемолиз.

ЦЕЛЬ:ознакомиться
с осмотическим и химическим видами
гемолиза.

ОСНАЩЕНИЕ:кровь
донорская дефибринированная,
физиологический раствор; 0,1 Н раствор
соляной кислоты; дистилированная вода,
стеклянные палочки.

ХОД
РАБОТЫ:в
пробирки с дистилированной водой,
физиологическим и 0,1 Н раствором HCl
добавляют по 0,5 мл дефибринованной
крови. Содержимое пробирок встряхивайте
в течение 30 секунд, а затем поставьте в
штатив и рассмотрите в проходящем свете.
В пробирке с дистилированной водой
отмечается осмотический гемолиз —
«лаковая кровь»; с соляной кислотой
— химический гемолиз — интенсивная
коричневая окраска. При наличии гемолиза
раствор становится ярко окрашенным и
прозрачным.

5. Проведение биологической пробы.

ЦЕЛЬ:
ознакомиться с методикой проведения
биологической пробы.

ОСНАЩЕНИЕ:
система, заполненная переливаемой
жидкостью (кровь, плазма, компоненты
крови -эритроцитарная масса и др.)

Проведение
пробы: первые 45 мл крови (плазмы) переливают
струйно по 15 мл через 3 минуты и наблюдают
за состоянием больного при вливании
каждой порции и в перерывах между
вливаниями.

Явления
несовместимости:беспокойное
поведение больного, чувства жара во
всем теле, стеснение в груди; боли в
пояснице, животе и голове; снижение
артериального давления, малый и частый
пульс, бледность кожных покровов; моча
красно-коричневого цвета («мясных
помоев») в результате гемолиза
эритроцитов. При явлениях несовместимости
переливание данной гемотрансфузионной
среды отменяется, проводятся клинические
и лабораторные исследования.

6. Определение времени остановки кровотечения.

В норме время
остановки кровотечения не превышает 4
мин. Удлинение при тромбоцитопениях и
тромбоцитопатиях (нарушениях функциональных
свойств тромбоцитов).

ЦЕЛЬ:
ознакомиться с методикой.

ОСНАЩЕНИЕ:
принадлежности для взятия крови,
секундомер, стерильная фильтровальная
бумага.

ХОД
РАБОТЫ: производится прокол кончика
пальца скарификатором. Включается
секундомер, каждые 30 секунд фильтровальной
бумагой снимается капля крови, выступившая
самостоятельно (без надавливания). После
остановки кровотечения секундомер
останавливается, палец обрабатывается
настойкой йода.

Свёртывание крови
in
vitro
обусловлено внутренним механизмом,
запускаемым за счёт контактной активации
фактора XII
(Хагемана). В норме свёртывание капиллярной
крови начинается через 0,5 – 2 минуты,
заканчивается через 3 – 5 минут. Свёртывание
крови, взятой из вены, составляет 5 – 10
минут. Удлинение времени свёртывания
отмечается при гипокоагуляции (гемофилии,
лечение антикоагулянтами), укорочение
– при гиперкоагуляции.

ЦЕЛЬ:
ознакомиться с определением времени
свёртывания капиллярной крови визуальным
методом.

ОСНАЩЕНИЕ:
принадлежности для взятия крови,
секундомер

ХОД
РАБОТЫ: после прокола пальца, первая
капля удаляется, в капилляр Панченкова
набирается 25 мм крови, включается
секундомер. Путём наклона капилляра на
45º кровь переводится на его середину,
затем, через каждые 30 секунд, капилляр
наклоняется на 45º в одну сторону,
возвращается в горизонтальное положение,
через 30 секунд наклоняется в другую
сторону.

А. Кистевая динамометрия

Показатель
индекса массы тела (ИМТ) или индекс Кетле
был разработан для определения массы
тела человека, при которой маловероятно
наступление страховых случаев. ИМТ –
это отношение массы тела в килограммах
к росту человека в метрах, возведённое
в квадрат: ИМТ=М/Р2
.

Оценка массы тела (значения ИМТ)	Показатель ИМТ испытуемого
Идеальная (20-23)
Избыточная (24- 29)
Ожирение (30 и более)

5-е
практическое занятие. Программируемый
контроль и собеседование по теме
«физиология дыхания и энергетический
обмен».

Одним
из показателей физического развития
организма является сила мышц. Оценку
силовых качеств человека осуществляют
методом динамометрии (кистевой и
становой), позволяющей определить
максимальную мышечную силу, показатель
силы, уровень работоспособности мышц
и показатель ее снижения.

Ц
е л ь р а б о т ы: освоить методику кистевой
динамометрии. Определить силу мышц
кисти, показатель силы, уровень
работоспособности мышц и показатель
ее снижения у испытуемого.

Д
л я р а б о т ы н е о б х о д и м ы: кистевой
динамометр, секундомер. Объект исследования
человек.

Х
о д р а б о т ы

а)
Определение максимальной силы мышц.

Испытуемый
берет динамометр в правую руку, отводит
ее от туловища под прямым углом. Вторая
рука опущена вниз вдоль туловища и
расслаблена. Динамометр трижды сжимается
с максимальным усилием без рывка, сначала
правой, затем левой рукой. Наибольшее
отклонение стрелки динамометра будет
показателем максимальной силы мышц
кисти.

б)
Определение показателя силы (ПС).

сила
мышц кисти (кг)

ПС
= ———————————
х 100

масса
тела (кг)

Сила
мышц правой руки кг

Показатель
силы ед

Сила
мышц левой руки кг

женщин
— 50 ед

мужчин
— 55 ед

в)
Определение уровня работоспособности
мышц.

Р
— уровень работоспособности;

f1,
f2
и т.д. — показатели динамометра (кг) при
отдельных мышечых
усилиях

n
— количество попыток.

В
выводах оценить силу мышц испытуемого,
указать, от чего зависит сила мышц. По
результатам 10-кратных усилий вычертить
график, который выявит характер снижения
работоспособности мышц: на оси абсцисс
отложить порядковые номера усилий, на
оси ординат — показатели динамометрии
при каждом усилии (рис 26).

г)
Определение показателя снижения уровня
работоспособности.

S
= [(f1
— fmin)/fmax ] х 100 , где;

S
— показатель снижения уровня
работоспособности;

f1
— величина начального мышечного усилия;

fmin
— минимальная величина мышечного усилия;

fmax
— максимальная величина мышечного
усилия.

Практические работы. Опыт с задержкой дыхания.

ЦЕЛЬ:
выяснить роль гипервентиляции и мышечной
нагрузки на длительность задержки
дыхания.

Ход
работы: испытуемый делает максимальный
вдох и на высоте вдоха задерживает
дыхание максимально долго, зажав нос,
жестом сигнализирует экспериментатору
момент первого появления желания сделать
выдох. Экспериментатор регистрирует
этот момент, а также момент окончания
задержки дыхания. Полученные результаты
заносятся в протокол. Через 5 мин.

испытуемый проводит гипервентиляцию
(10 глубоких вдохов и выдохов) и снова
задерживает дыхание. Так же, как и в
первый раз регистрируются те же моменты
и заносятся в протокол. Через 5 мин.
испытуемый совершает физическую работу
(20 приседаний за 30 сек.) и вновь определяется
время задержки дыхания. Результаты
работы заносят в протокол. Сравнить
величины времени в 3 исследованиях (в
покое, после гипервентиляции, после
мышечной работы), сделать выводы.

	Время задержки дыхания, с
В покое
После гипервентиляции
После 20-ти приседаний

Частота,
относительная глубина и регуляция
дыхания

Эйпноэ
– нормальное спокойное дыхание, средняя
частота составляет 12-14 циклов в минуту.

Гипервентиляция
– частота и глубина дыхания увеличиваются
до такого уровня, что лёгкие выводят
двуокись углерода из организма быстрее,
чем она продуцируется. Ионы водорода
удаляются из жидких сред организма,
уровень рН возрастает. Это понижает
вентиляцию до тех пор, пока не восстановится
нормальный уровень содержания двуокиси
углерода и ионов водорода. Временная
приостановка дыхания после произвольной
гипервентиляции называется апноэ.

Гиповентиляция
– возникает при неглубоком и/или редком
дыхании, когда лёгкие не могут выводить
двуокись углерода так быстро, как она
образуется. В жидких средах организма
усиливается продуцирование угольной
кислоты, понижается рН. Это приводит к
усилению дыхания до тех пор, пока уровень
содержания двуокиси углерода и рН не
достигнут нормы.

Зарегистрировать
вентиляцию и температурные изменения
потока воздуха при различных паттернах
дыхания.

ОБОРУДОВАНИЕ
И МАТЕРИАЛЫ: Компьютеризированный
комплекс для лабораторных
электрофизиологических исследований
BIOPAC,
датчик дыхательного усилия, датчик
температуры, односторонняя медицинская
клейкая лента.

Включение
и калибровка.

Включите компьютер.
Подключите датчик дыхательного усилия
к каналу 1 (СН 1), а датчик температуры к
каналу 2 (СН 2). Включите блок BIOPAC.
Закрепите датчик дыхательного усилия
и датчик температуры на испытуемом.

Запустите программу
Biopac
Student
Lab.
Выберите урок “L08-Resp-1”.

Калибровка.

Испытуемый должен
сидеть в расслабленном состоянии,
нормально дыша. Нажмите Calibrate.
Подождите 2 секунды, затем 1 цикл глубокого
дыхания, затем снова нормальное дыхание.
Дождитесь окончания процедуры Калибровки
(продлится 8 секунд). Оба канала регистрации
должны отражать некоторые колебания.
При несоответствии нажмите Redo
Calibration
(Повторить Калибровку).

Регистрация
данных.

Приготовьтесь к
регистрации и попросите Испытуемого
сесть и расслабиться.

Сегмент 1. Испытуемый
должен сидеть в кресле и дышать нормально.
Нажмите Record
(Запись). Записывайте в течение 15 секунд.
Нажмите на Suspend
(Приостановить). Если были сбои регистрации,
нажмите на Redo
(Повторно выполнить).

Сегмент 2.
Гипервентиляция. Нажмите Resume
(Возобновить). Испытуемый должен дышать
через рот учащённо и глубоко 30 секунд.
Затем вновь дышать через нос до тех пор,
пока не установится нормальный паттерн
дыхания. Нажмите на Suspend
(Приостановить).

Сегмент 3.
Гиповентиляция. Нажмите Resume
(Возобновить). Испытуемый должен дышать
через рот неглубоко и медленно 30 секунд.
Затем вновь дышать через нос до тех пор,
пока не установится нормальный паттерн
дыхания. Нажмите на Suspend
(Приостановить).

Сегмент 4. Кашель,
потом чтение вслух. Нажмите Resume
(Возобновить). Испытуемый должен кашлянуть
один раз, затем читать вслух на протяжении
60 секунд. Нажмите на Suspend
(Приостановить).

Нажмите Done
(Готово). Для регистрации данных другого
испытуемого выбрать опцию – “Record
from
another
subject”.

Анализ данных.

Войдите в режим
просмотра сохранённых данных (Review
Saved
Data)
и выберите нужный файл. Обозначение
номеров каналов (СН): канал СН 2 отображает
поток воздуха; канал СН 40 – дыхание.
Установите каналы вычислений следующим
образом: СН 40 – ΔТ (время от начала и до
конца выделенного участка); СН 40 – ВРМ
(частота);

С помощью I-образного
курсора выделите участки вдоха, выдоха
для 3-х циклов Сегмента 1.
Повторите измерения для данных остальных
3-х сегментов. Выделите по три независимых
цикла в каждом из четырёх сегментов
данных и определите амплитуду дыхания
для каждого. Выделите интервал между
максимальным вдохом и наибольшим
перепадом температур в каждом сегменте
данных.

ОТЧЕТ
ПО РЕЗУЛЬТАТАМ ИЗМЕРЕНИЙ

Физиология пищеварения

1-е практическое
занятие. Концепции питания и пищеварения.
Пищеварение в полости рта и желудке.

Пищеварение, его
физиологическая роль. Классическая и
современная концепции питания и
пищеварения. Функции пищеварительного
тракта. Экспериментальные и клинические
методы исследования функций пищеварительного
тракта.

Пищеварение в
полости рта. Рецепторная роль ротовой
полости. Механизм слюноотделения.
Количество, состав и свойства слюны, её
физиологическое значение. Регуляция
слюноотделения. Акты жевания и глотания.

Пищеварение в
желудке. Количество, состав и свойства
желудочного сока. Регуляция желудочной
секреции, её фазы. Особенности сокоотделения
в фундальном и пилорическом отделах
желудка. Моторная функция органов
пищеварения. Виды сокращения желудка,
их роль. Роль сфинктеров желудка.

Вопросы
программированного контроля по теме
занятия.

1.
Что такое пищеварение? Какие функции
выполняет пищеварительный тракт?

2.
Какие непищеварительные функции
выполняют органы ЖКТ?

3.
Какие черты характеризуют современную
концепцию пищеварения, какие классическую?

4.
Каково значение балластных веществ для
организма?

5.
Что характерно для полостного,
пристеночного (мембранного) пищеварения?

6.
Какие вещества относятся к нутриентам,
какие к вторичным нутриентам?

7.
Как называется нарушение пищевого
поведения, проявляющееся отказом от
пищи при наличии

объективной
потребности в ней?

8.
Как называется комплекс положительных
эмоций, предваряющих приём пищи?

9.
Что означают термины: анорексия, булимия,
аппетит, ахилия, афагия?

10.
Как называется патологическое, резко
усиленное чувство голода?

11.
Что характерно для пищевого поведения
при возбуждении (при разрушении)

вентромедиальных
ядер гипоталамуса?

12.
Что характерно для пищевого поведения
при возбуждении (разрушении) латеральных
ядер

гипоталамуса
(центр голода)?

13.
Что изучают с помощью мастикациографии?

14.
Какие слюнные железы выделяют серозный
секрет, какие смешанный?

15.
Какие функции обеспечивает слюна, какие
в ней ферменты?

16.
От каких факторов зависит ферментативный
состав и свойства слюны?

17.
Какое вещество обеспечивает бактерицидное
свойство слюны?

18.
Влияние раздражения симпатических
(парасимпатических) нервов на
слюноотделение?

19.
Какие вещества расширяют сосуды слюнных
желёз и стимулируют слюноотделение?

20.
Какие факторы приводят к активации
(торможению) слюноотделения?

21.
Какие факторы запускают условнорефлекторное
слюноотделение?

22.
Что характерно для акта глотания?
Физиологические особенности пищевода?

23.
Какие рецепторы принимают участие в
саморегуляции жевания?

24.
Методики исследования слюноотделения
у животных и человека?

25.
Какие пищеварительные (непищеварительные)
функции выполняет желудок?

26.
Какие железы желудка продуцируют
пепсиногены, соляную кислоту, мукоидный
секрет?

27.
Что характерно для сока фундальной и
пилорической частей желудка?

28.
Каково значение соляной кислоты
желудочного сока, её функции?

29.
Что характерно для пепсиногенов,
гастриксинов желудочного сока?

30.
Какие факторы усиливают (тормозят)
желудочную секрецию, моторику?

31.
Какие экспериментальные методики
позволяют получить желудочный сок?

32.
Что можно определить при фракционном
зондировании желудка?

33.
Чему равен объём базальной секреции
желудочного сока (в мл)?

34.
Чему равен часовой объём стимулированной
(гистамином) субмаксимальной секреции

желудочного
сока (в мл)?

35.
Чем можно стимулировать желудочную
секрецию при фракционном зондировании?

36.
Какие функции позволяют исследовать
методики Лешли-Красногорского,
Гейденгайна,

Павловский
желудочек, операция Тири-Велла, фистула
Экка-Павлова, фистула Басова,

ангиостомия
по Лондону, фистула лимфатического
протока?